人二倍体细胞建株、检定及制备疫苗规程
人二倍体细胞株来源于正常人胎儿组织,主要用于培养病毒制备疫苗等。
[B]A细胞株的要求[/B]
用于疫苗生产的人二倍体细胞株(以下简称细胞株)须按下列规定进行全面检定。新建立细胞株,应按《新生物制品审批办法》进行审批。
1 建立细胞株必须具备下列资料
1.1 建立细胞株所用的胎儿的胎龄和性别,中止妊娠原因。
1.2 建立细胞株所用胎儿的父、母年龄、职业及健康状况,胎儿父、母系三代应无明显遗传缺陷和肿瘤疾病历史。在取胎儿组织时,应作出详细调查,报卫生部审批前,应进行一次重复调查。
1.3 原始组织种类,原代培养的数量与生长状况。
1.4 细胞培养史和生长特征,细胞寿命、世代数。
1.5 细胞生长液的成分。
2 细胞株的检定
2.1 染色体的鉴定和制片
细胞原系建株过程,每8~12世代*应作一次染色体检查,一株细胞整个生命期内连续培养过程中,至少应有4~5次染色体检查结果。
每次染色体检查,应从同一世代不同细胞培养瓶中取细胞混合再培养,制备染色体标本片。染色体标本应长期保存(直至褪色不能用为止),以备复查。
每次染色体检查,至少应随机取1000个分裂中期细胞,进行染色体数目、形态和结构检查,并作出有助于复查的记录,其中至少选择50个分裂中期细胞进行显微照相,作出核型分析。并应粗数500个分裂中期细胞,检查多倍体的发生率。
可以G分带或Q分带技术检查50个中期细胞染色体带型,应用照相图片作出带型分析。以显带技术检出的核型异常(假二倍体、倒位、易位等)发生率应用比现用上限更宽的基本数据进行评价,合格上限尚未定出。
2.1.1 合格要求
1000个和500个中医细胞标本中,检查异常率、合格的上限(可信限95%,Poison法)如表1。
表1
异常 | 检查细胞数(个) | ||
1000 | 500 | 100 | |
染色单体和染色体断裂 | 47 | 26 | 8 |
结构异常 | 17 | 10 | 2 |
超二培性 | 8 | 5 | 2 |
亚二倍性[SB]*[/SB] | 180 | 90 | 18 |
多倍性[SB]**[/SB] | 30 | 17 | 4 |
*亚二倍性超过上限时,可选用批标本片重数
**+一个中期细胞内超过53条染色体即为一个多倍体
2.1.2 染色体制片要求
应及时进行制片质量检查,如发现细胞堆积,染色体分散不好等,由于技术原因不适于读片时,可以及时重新制片。但已经读片后,不断因某项超过标准(亚二位性除外)而废弃不算。如考虑到制片技术与质量问题,可重试两次,当有一次结果与原结果相近时,又无可知原因,应以原结果为准。
2.2 外源因子检查
细胞株不应有细菌、霉菌、支原体和病毒等污染。每8~12世代细胞培养物,应进行下列检查。
2.2.1 细菌、霉菌、支原体检查
按《生物制品无菌试验规程》进行。
2.2.2 病毒检查
2.2.2.1 细胞直接观察及红细胞吸附试验
取混合瓶细胞样品,接种小瓶或小管,长成单层后更换维持液,观察2周,镜检细胞,应保持正常形态特征。培养7天,用0.2%~0.5%鸡和豚鼠混合红细胞悬液进行红细胞吸附试验,先置于4~8℃,后置于20~25℃,各30分钟,两次观察结果均应为阴性。
2.2.2.2 细胞培养检查
细胞培养的上清液混合样品,至少接种4种细胞(原代人肾或猴肾细胞、原代兔肾细胞、人源传代细胞和另一批人二倍体细胞)。接种的样品量应占维持液的20%以上,于培养5~7天和14天时,进行红细胞吸附试验(见2.2.2.1项)。培养7天的上清液在同种细胞培养上盲传一代,观察14天,应无细胞病变,红细胞吸附试验应为阴性(在该试验的细胞维持液中,允许加入少量该细胞培养用的牛血清,以利细胞维持和观察)。
2.2.2.3 动物试验检查
用乳鼠、成鼠、家兔、豚鼠和鸡胚各一组。每组动物或鸡胚接种受检细胞不应少于10[SB]7[/SB]。按表2所列要求进行试验和观察。如80%以上动物和鸡胚健存,此试验为通过。
2.2.2.4 其他检查
细胞株传代过程中,至少于2个不同世代水平进行包涵体、乙型肝炎表面抗原及电镜检查,结果均应为阴性。
2.3 肿瘤原体检查
每8~12世代做一次细胞株的异种移植试验,观察细胞株有无致肿瘤性质,每次实验使用6只乳鼠(3~5日龄)或体重8~10g小白鼠,经抗胸腺血清(ATS)处理,皮下接种活二倍体细胞(最适传代的细胞),观察14天,检查有无结节形成。有结节或可疑病灶时,做病理切片检查。试验同时,用HeLa或其他人源传代细胞系做阳性对照试验,用动物数与处理方法同试验组,接种被检二倍体细胞数应为对照肿瘤细胞数的5倍以上。结果二倍体细胞株不应有移植瘤形成,而对照组细胞则应有80%或更多的动物有典型移植瘤出现(肿瘤结节需经病理组织学诊断)。
表2
动物组别 | 要求 | 动物或鸡胚数 | 接种途径 | 接种细胞悬液量 (ml/只) | 观察天数 | 结果 |
乳鼠 | 24小时内 | 2窝≥10 | 脑内 腹腔 | 0.01 0.1 | 21 | 应健存 |
成鼠 | 12~14g | 10 | 脑内 腹腔 | 0.03 0.5 | 21 | 应健存 |
豚鼠 | 350~500g | 5 | 腹腔 | 5.0 | 42 | 应健存,解剖无结核病变 |
家兔 | 1.5~2.5kg | 5 | 皮内 皮下 | 0.1×10** 9.0 | 21 | 无异常 健存 |
鸡胚 | 9~11日龄 | 10 | 尿囊腔 | 0.2 | 3~4 | 尿液血凝试验阴性*** |
*豚鼠于注射前及观察4周作旧结核菌素试验,应为阴性
**每只于背部皮内注射10处,每处0.1ml
***应用豚鼠和鸡混合红细胞作直接血凝试验
可以用任何以免疫抑制剂处理,并对肿瘤细胞有同样敏感性的其他动物试验,如无胸腺小白鼠(nude nu/nu基因型等)。
3 细胞种子
细胞株传代过程的早期,应选定适应世代数培养出大量细胞,制成悬液,分装安瓿作为细胞种子。置液氮中冻存,以备细胞株建成后,大量供应细胞。
冻存的种子细胞活存率应在60%以上。冻存后一定时间,应至少复苏培养一系至衰老期,并在不同传代水平,检查细胞株的生长、胞核学特征、异种移植等,证明细胞经冻存后的生物学性质无明显改变。
[B]B二倍体细胞用于疫苗生产的要求[/B]
1 细胞
1.1 细胞株
用于疫苗生产的细胞株,必须符合本规程要求。不含外源因子、核型正常、对病毒敏感和具有足够多的细胞种子。可用KMB-17、2BS等细胞株。所用细胞株均须经卫生部批准。
1.2 细胞种子批
一个细胞种子批应有足够量早世代细胞,分装安瓿保存于液氮中,作为细胞种子。
2 生产用细胞种子批
用一个或数个细胞种子安瓿传代增殖到适宜世代,具有一定量的均一细胞悬液,分装安瓿,标明世代、安瓿号和冻存的日期,保存于液氮中,作为生产用细胞种子。
2.1 生产用细胞种子批检定
2.1.1 细菌、霉菌、支原体检查
按《生物制品无菌试验规程》进行。
2.1.2 动物和鸡胚检查外源因子
用生产用细胞种子世代水平或至2/3世代寿命水平的细胞作检定样品。用下列动物和鸡胚检查:
乳鼠(24小时内) | 2窝最少 | 10只 |
成鼠 | 12~14g | 10只 |
豚鼠 | 350~500g | 5只 |
家兔 | 1.5~2.5kg | 5只 |
鸡胚 | 9~11日龄 | 10只 |
各种动物和鸡胚的接种法、观察期,按照A2.2.2.3条进行。
2.1.3 肿瘤原性检查
按A2.3项执行。
2.1.4 染色体的监测
检查用于生产的最后一个世代或其后任一世代,至少检查500个中期细胞的多倍性、染色体精确计数、断裂率、结构异常及其他异常发生率,例如螺旋消失或初级次缢痕或次级次缢痕的明显减弱等。按A2.1.1项进行评价。
生产用细胞库细胞染色体监测用的染色体标本片和照片,应作为该细胞批监测此细胞生产疫苗批的记录,永久保存。
3 生产用细胞的培养
3.1 从生产用细胞种子开始传代培养,以适宜分种率连续传代,直至增殖足够量的细胞培养物用于生产。用于生产的细胞世代,应在细胞整个寿命期的前2/3世代内。
3.2 细胞外源因子检查
于种毒当天,或在连续传代种毒,于最后一次细胞种毒当天,此批细胞留取2%~5%不种毒,换维持液作为正常细胞对照,以检查外源因子。从换液之日起观察2周,细胞应无异常变化。
用换维持液0~2天的对照细胞上清液,接种原代兔肾、非人灵长类传代细胞及另一批人二倍体细胞,接种样品量应占维持液的20%。观察14天,换液后5~8天用上清液,在相应细胞盲代一代,观察14天,做血吸附试验。
在收毒时,用0.2%~0.5%鸡和豚鼠红细胞,在2~8℃和20~25℃做血吸附试验,应为阴性。
3.3 细胞鉴别试验
在生产用细胞世代水平或其后数代,检查300个中期细胞,计数多倍体,作100个中期细胞染色体检查,应核型正常,鉴别确为本细胞无误。
除染色体监测外,还可用HLA表面抗原鉴定试验。
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*细胞“世代”的说明:英文是“Population doubling”,简写“PD”,译成“群体培增”,为通俗和习惯以名词“世代”来表示。PD可按实际计数,增加一倍,或按细胞培养面积,增加一倍,为一个PD,即一个世代。也就是细胞以1:2分种率传代则为一个世纪,以1:4分种率传代则为2个世代,1:8分种率传代则为3个世代。